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免疫膠體金技術
應用于抗原抗體的標記技術
基本信息
| 外文名 | Immune colloidal gold technique |
正文
免疫膠體金技術(Immune colloidal gold technique) 是以膠體金作為示蹤標志物應用于抗原抗體的一種新型的免疫標記技術。膠體金是由氯金酸（HAuCl4）在還原劑如白磷、抗壞血酸、枸櫞酸鈉、鞣酸等作用下，聚合成為特定大小的金顆粒，并由于靜電作用成為一種穩(wěn)定的膠體狀態(tài)，稱為膠體金。膠體金在弱堿環(huán)境下帶負電荷，可與蛋白質分子的正電荷基團形成牢固的結合，由于這種結合是靜電結合，所以不影響蛋白質的生物特性。膠體金除了與蛋白質結合以外，還可以與許多其它生物大分子結合，如SPA、PHA、ConA等。根據(jù)膠體金的一些物理性狀，如高電子密度、顆粒大小、形狀及顏色反應，加上結合物的免疫和生物學特性，因而使膠體金廣泛地應用于免疫學、組織學、病理學和細胞生物學等領域。
使用優(yōu)點
? (1)使用方便快速，便于基層使用和現(xiàn)場使用，所有反應能在15分鐘內完成；
(2)成本低，不需要特殊的儀器設備；
(3)應用范圍廣，可適應多種檢測條件；
(4)可以進行多項檢測，若陽性樣本比較難獲得，多項檢測可以節(jié)省樣品，降低成本；
(5)標記物穩(wěn)定，標記樣品在4℃貯存兩年年以上，無信號衰減現(xiàn)象；
(6)膠體金本身為紅色，不需要加入發(fā)色試劑，省卻了酶標的致癌性底物及終止液的步驟，對人體無毒害。
膠體金的制備
根據(jù)不同的還原劑可以制備大小不同的膠體金顆粒。常用來制備膠體金顆粒的方法如下。
1．枸櫞酸三鈉還原法
（2）15nm膠體金顆粒的制備：取0.01%HAuCl4水溶液100ml，加入1%枸櫞酸三鈉水溶液2ml，加熱煮沸15min～30min，直至顏色變紅。冷卻后加入0.1Mol/L K2CO30.5ml，混勻即可。
（3）15nm、18nm～20nm、30nm或50nm膠體金顆粒的制備：取0.01%HAuCl4水溶液100ml，加熱煮沸。根據(jù)需要迅速加入1%枸櫞酸三鈉水溶液4ml、2.5ml、1ml或0.75ml，繼續(xù)煮沸約5min，出現(xiàn)橙紅色。這樣制成的膠體金顆粒則分別為15nm、18～20nm、30nm和50nm。
2．鞣酸—枸櫞酸鈉還原法
A液：1%HAuCl4水溶液1ml加入79ml雙餾水中混勻。
3．制備高質量膠體金的注意事項
（1）玻璃器皿必須徹底清洗，最好是經過硅化處理的玻璃器皿，或用第一次配制的膠體金穩(wěn)定的玻璃器皿，再用雙餾水沖洗后使用。否則影響生物大分子與金顆粒結合和活化后金顆粒的穩(wěn)定性，不能獲得預期大小的金顆粒。
（2）試劑配制必須保持嚴格的純凈，所有試劑都必須使用雙餾水或三餾水并去離子后配制，或者在臨用前將配好的試劑經超濾或微孔濾膜（0.45μm）過濾，以除去其中的聚合物和其它可能混入的雜質。
（3）配制膠體金溶液的pH以中性（pH7.2）較好。
（5）氯金酸配成1%水溶液在4℃可保持數(shù)月穩(wěn)定，由于氯金酸易潮解，因此在配制時，最好將整個小包裝一次性溶解。
膠體金標記蛋白的制備
膠體金對蛋白的吸附主要取決于pH值，在接近蛋白質的等電點或偏堿的條件下，二者容易形成牢固的結合物。如果膠體金的pH值低于蛋白質的等電點時，則會聚集而失去結合能力。除此以外膠體金顆粒的大小、離子強度、蛋白質的分子量等都影響膠體金與蛋白質的結合。
2．待標膠體金溶液的準備 以0.1Mol/L K2CO3或0.1Mol/L HCl調膠體金液的pH值。標記IgG時，調至9.0；標記MCAB時，調至8.2；標記親和層析抗體時，調至7.6；標記SPA時，調至5.9～6.2；標記ConA時，調至8.0；標記親和素時，調至9～10。
3．膠體金與標記蛋白用量之比的確定
（1）根據(jù)待標記蛋白的要求，將膠體金調好pH之后，分裝10管，每管1ml。
（2）將標記蛋白（以IgG為例）以0.005Mol/L pH9.0硼酸鹽緩沖液做系列稀釋為5μg/ml～50μg/ml，分別取1ml，加入上列金膠溶液中，混勻。對照管只加1ml稀釋液。
（3）5min后，在上述各管中加入0.1ml 10%NaCl溶液，混勻后靜置2h，觀察結果。
（4）結果觀察，對照管（未加蛋白質）和加入蛋白質的量不足以穩(wěn)定膠體金的各管，均呈現(xiàn)出由紅變藍的聚沉現(xiàn)象；而加入蛋白量達到或超過最低穩(wěn)定量的各管仍保持紅色不變。以穩(wěn)定1ml膠體金溶液紅色不變的最低蛋白質用量，即為該標記蛋白質的最低用量，在實際工作中，可適當增加10%～20%。
4．膠體金與蛋白質（IgG）的結合 將膠體金和IgG溶液分別以0.1Mol/L K2CO3調pH至9.0，電磁攪拌IgG溶液，加入膠體金溶液，繼續(xù)攪拌10min，加入一定量的穩(wěn)定劑以防止抗體蛋白與膠體金聚合發(fā)生沉淀。常用穩(wěn)定劑是5%胎牛血清（BSA）和1%聚乙二醇（分子量20KD）。加入的量：5%BSA使溶液終濃度為1%；1%聚乙二醇加至總溶液的1/10。
5．膠體金標記蛋白的純化
（1）超速離心法：根據(jù)膠體金顆粒的大小，標記蛋白的種類及穩(wěn)定劑的不同選用不同的離心速度和離心時間。
用BSA做穩(wěn)定劑的膠體金—羊抗兔IgG結合物可先低速離心（20nm金膠粒用1 200r/min，5nm金膠粒用1 800r/min）20min，棄去凝聚的沉淀。然后將5nm膠體金結合物用6 000g，4℃離心1h；20nm～40nm膠體金結合物，14 000g，4℃離心1h。仔細吸出上清，沉淀物用含1%BSA的PB液（含0.02%NaN3），將沉淀重懸為原體積的1/10，4℃保存。如在結合物內加50%甘油可貯存于-18℃保存一年以上。
（2）凝膠過濾法：此法只適用于以BSA作穩(wěn)定劑的膠體金蛋白結合物的純化。將膠體金蛋白結合物裝入透析袋，在硅膠中脫水濃縮至原體積的1/5～1/10。再經1 500r/min離心20min。取上清加至Sephacryl S-400（丙烯葡聚糖凝膠S-400）層析柱分別純化。層析柱為0.8 cm×20cm，加樣量為床體積的1/10，以0.02Mol/L PBS液洗脫（內含0.1%BSA，0.05%NaN3，pH8.2者用IgG標記物），流速為8ml/h。按紅色深淺分管收集洗脫液。一般先濾出的液體為微黃色，有時略混濁，內含大顆粒聚合物等雜質。繼之為純化的膠體金蛋白結合物，隨濃度的增加而紅色逐漸加深，清亮透明，最后洗脫出略帶黃色的為標記的蛋白組分。將純化的膠體金蛋白結合物過濾除菌、分裝,4℃保存。最終可得到70%～80%的產量。
6．膠體金蛋白結合物的質量鑒定
（2）膠體金溶液的OD520nm值測定：膠體金顆粒在波長510nm～550nm之間出現(xiàn)最大吸收值峰。用0.02Mol/L pH8.2 PBS液（含1%BSA，0.02%NaN3）將膠體金蛋白試劑作1︰20稀釋，OD520=0.25左右。一般應用液的OD520應為0.2～0.4。
層析法免疫膠體金檢測試劑的組成和結構
膠體金作為免疫標記物始于1971年，由Faulk和Taylor將其引入免疫化學。Faulk 和Taylor首先將兔抗沙門氏菌抗血清與膠體金顆粒結合，用直接免疫細胞化學技術檢測沙門氏菌的表面抗原。此后，他們還把膠體金與抗膠原血清，植物血凝素，卵白蛋白，人免疫球蛋白輕鏈、牛血清白蛋白結合應用。1974年Romano和他的同事們將膠體金標記在馬抗人的IgG上，實現(xiàn)了間接免疫金染色法。層析法檢測試劑最早出現(xiàn)于1988年，是Unipath公司利用染料顆粒開發(fā)生產的一種非常方便使用的懷孕檢測試劑。1989年，Spielberg F等發(fā)展了以膠體金為標記物用于檢測艾滋病毒抗體的滲濾法檢測試劑，此后，免疫膠體金在快速檢測試劑中得到了廣泛的應用和發(fā)展，相伴隨的層析法檢測試劑在組成結構、生產用的材料等方面也取得了長足的進步。
目前市場上見到的典型的層析法檢測試劑的組成成份可分為三個部分，其一是多孔材料，包括樣品墊、吸水墊、結合墊及硝酸纖維膜；其二是試劑，如抗體、金標結合物等；其三是層壓結構及卡盒，如PVC板、雙面膠、盒等（見表1及圖1）。
層析法檢測試劑的各組分，并非簡單的相互疊加，改變其中的任一組分，都可能引起產品整體性能的變化。以最常見的早早孕檢測試劑為例，影響其產品敏感度的因素可能有：
*硝酸纖維膜的特性，主要反應在其流速上。
*膠體金顆粒的大小，濃度等
*結合墊的性能，金標結合物的量
*樣品墊的特性
*檢測線的位置及寬度
*硝酸纖維膜和結合墊的疊壓強度
*捕獲抗體的親合力
*檢測線包被捕獲抗體的量
*結合抗體的特性
層析法免疫膠體金檢測試劑的測試原理
層析法免疫膠體金檢測試劑實際上是免疫金標記技術和抗原抗體反應相結合而形成的一種應用形式，相比ELISA試劑，除標記物不同外，同樣服從于抗原抗體反應的特性。此種檢測方法具有明顯的優(yōu)點：
*方便使用，體現(xiàn)在操作簡單，不需經過特殊培訓。
*短時間獲得檢測結果，一般10－15分鐘即可得出結論。
*不同環(huán)境下的穩(wěn)定性好，不需冷藏。
*相比而言，其生產成本和檢測成本均較低。
*檢測標本種類多：可用于查血、尿液或糞便，因而適合各種檢查
在免疫學中的應用
膠體金標記技術由于標記物的制備簡便，方法敏感、特異，不需要使用放射性同位素，或有潛在致癌物質的酶顯色底物，也不要熒光顯微鏡，它的應用范圍廣，除應用于光鏡或電鏡的免疫組化法外，更廣泛地應用于各種液相免疫測定和固相免疫分析以及流式細胞術等。
1．液相免疫測定：將膠體金與抗體結合，建立微量凝集試驗檢測相應的抗原，如間接血凝一樣，用肉眼可直接觀察到凝集顆粒。利用免疫學反應時金顆粒凝聚導致顏色減退的原理，建立均相溶膠顆粒免疫測定法（Sol particle immunoassay ,SPIA）已成功地應用于PCG的檢測，直接應用分光光度計進行定量分析。
2．金標記流式細胞術：膠體金可以明顯改變紅色激光的散射角，利用膠體金標記的羊抗鼠Ig抗體應用于流式細胞術，分析不同類型細胞的表面抗原，結果膠體金標記的細胞在波長632nm時，90度散射角可放大10倍以上，同時不影響細胞活性。而且與熒光素共同標記，彼此互不干擾。
3．膠體金固相免疫測定法
（1）斑點免疫金銀染色法（Dot－IGS/IGSS）是將斑點ELISA與免疫膠體金結合起來的一種方法。將蛋白質抗原直接點樣在硝酸纖維膜上，與特異性抗體反應后，再滴加膠體金標記的第二抗體，結果在抗原抗體反應處發(fā)生金顆粒聚集，形成肉眼可見的紅色斑點，此稱為斑點免疫金染色法（Dot－IGS）。此反應可通過銀顯影液增強，即斑點金銀染色法（Dot－IGS/IGSS）。
（2）斑點金免疫滲濾測定法（dot immuno－gold filtration assay,DIGFA）此法原理完全同斑點免疫金染色法，只是在硝酸纖維膜下墊有吸水性強的墊料，即為滲濾裝置。在加抗原（抗體）后，迅速加抗體（抗原），再加金標記第二抗體，由于有滲濾裝置，反應很快，在數(shù)分鐘內即可顯出顏色反應。此方法已成功地應用于人的免疫缺陷病病毒（HIV）的檢查和人血清中甲胎蛋白的檢測。
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